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細(xì)胞培養(yǎng)常見問題及對策
更新時間:2022-04-18 點擊量:1728
1 冷凍管應(yīng)如何解凍? 取出冷凍管后,須立即放入 37 C 水槽中快速解凍,輕搖冷凍管使其在 1 分 鐘內(nèi)全部融化,并注意水面不可超過冷凍管蓋沿,否則易發(fā)生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時,必須注意安全,預(yù)防冷凍管之爆裂。 2 細(xì)胞冷凍管解凍培養(yǎng)時,是否應(yīng)馬上去除 DMSO ? 除少數(shù)特別注明對 DMSO 敏感之細(xì)胞外,絕大部分細(xì)胞株( 包括懸浮性細(xì) 胞), 在解凍之后,應(yīng)直接放入含有 10-15ml 新鮮培養(yǎng)基之培養(yǎng)角瓶中,待隔 天再置換新鮮培養(yǎng)基以去除 DMSO 即可,如此可避免大部分解凍后細(xì)胞無法生長或貼附之問題。 3 可否使用與原先培養(yǎng)條件不同之培養(yǎng)基? 不能。每一細(xì)胞株均有其特定使用且已適應(yīng)之細(xì)胞培養(yǎng)基,若驟然使用和原先提供之培養(yǎng)條件不同之培養(yǎng)基,細(xì)胞大都無法立即適應(yīng),造成細(xì)胞無法存活。 4 可否使用與原先培養(yǎng)條件不同之血清種類? 不能。血清是細(xì)胞培養(yǎng)上一個極為重要的營養(yǎng)來源,所以血清的種類和品質(zhì)對于細(xì)胞的生長會產(chǎn)生極大的影響。來自不同物種的血清,在一些物質(zhì)或分子的量或內(nèi)容物上都有所不同,血清使用錯誤常會造成細(xì)胞無法存活。 5 何謂 FBS, FCS, CS , HS ? FBS (fetal bovine serum) 和 FCS (fetal calf serum) 是相同的意思,兩者都是指胎牛血清, FCS 乃錯誤的使用字眼,請不要再使用。 CS (calf serum) 則是指小牛血清。 HS (horseserum) 則是指馬血清。 6 培養(yǎng)細(xì)胞時應(yīng)使用 5 % 或 10% CO2 ?或根本沒有影響? 一般培養(yǎng)基中大都使用 HCO3-/CO32-/H+ 作為 pH 的緩沖系統(tǒng),而培養(yǎng)基 中 NaHCO3 的含量將決定細(xì)胞培養(yǎng)時應(yīng)使用的 CO2 濃度。當(dāng)培養(yǎng)基中 NaHCO3 含量為每公升 3.7 g 時,細(xì)胞培養(yǎng)時應(yīng)使用 10% CO2 ;當(dāng)培養(yǎng)基中 NaHCO3 為每公升 1.5 g 時,則應(yīng)使用 5% CO2 培養(yǎng)細(xì)胞。 7 何時須更換培養(yǎng)基? 視細(xì)胞生長密度而定,或遵照細(xì)胞株基本數(shù)據(jù)上之更換時間,按時更換培養(yǎng)基即可。 8 培養(yǎng)基中是否須添加抗生素? 除于特殊篩選系統(tǒng)中外,一般正常培養(yǎng)狀態(tài)下,培養(yǎng)基中不應(yīng)添加任何抗生素。 9 附著性細(xì)胞繼代時所使用之 trypsin-EDTA 濃度?應(yīng)如何處理? 一般使用之 trypsin-EDTA 濃度為 0.05% trypsin-0.53m MEDTA.4 Na 。第一 次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試管中,保存于 –20 C ,避免反復(fù)冷凍解凍造 成 trypsin 之活性降低,并可減少污染之機會。 10 懸浮性細(xì)胞應(yīng)如何繼代處理? 一般僅需持續(xù)加入新鮮培養(yǎng)基于原培養(yǎng)角瓶中,稀釋細(xì)胞濃度即可,若培養(yǎng)液太多時,可將培養(yǎng)角瓶口端稍微抬高,直到無法容納為止。分瓶時取出一部份含細(xì)胞之培養(yǎng)液至另一新的培養(yǎng)角瓶,加入新鮮培養(yǎng)基稀釋至適當(dāng)濃度, 重復(fù)前述步驟即可。 11 欲將一般動物細(xì)胞離心下來,其離心速率應(yīng)為多少轉(zhuǎn)速?
欲回收動物細(xì)胞,其離心速率一般為 300xg ( 約 1,000rpm) , 5 - 10 分鐘,過 高之轉(zhuǎn)速,將造成細(xì)胞死亡。 12 細(xì)胞之接種密度為何? 依照細(xì)胞株基本數(shù)據(jù)上之接種密度或稀釋分盤之比例接種即可。細(xì)胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細(xì)胞無法生長之一重要原因。 13 細(xì)胞冷凍培養(yǎng)基之成份為何? 動物細(xì)胞冷凍保存時最常使用的冷凍培養(yǎng)基是含 5 - 10% DMSO (dimethyl sulfoxide) 和 90 - 95 % 原來細(xì)胞生長用之新鮮培養(yǎng)基均勻混合之。注意:由于 DMSO 稀釋時會放出大量熱能,故不可將 DMSO 直接加入細(xì)胞液中,必須使用前先行配制完成。 14 DMSO 之等級和無菌過濾之方式為何? 冷凍保存使用之 DMSO 等級,必須為 Tissue culture grade 之 DMSO ( 如 Sigma D2650) ,其本身即為無菌狀況,第一次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試 管中,保存于 4 C ,避免反復(fù)冷凍解凍造成 DMSO 之裂解而釋出有害物質(zhì),并 可減少污染之機會。若要過濾 DMSO ,則須使用耐 DMSO 之 Nylon 材質(zhì)濾膜。 15 冷凍保存細(xì)胞之方法? 冷凍保存方法一:冷凍管置于 4 C 30~60 分鐘 → (-20 C 30 分鐘 ) → -80 C 16~18 小時 ( 或隔夜 ) → 氮槽 vapor phase 長期儲存。 冷凍保存方法二 : 冷凍管置于已設(shè)定程序之可程序降溫機中每分鐘降 1-3 C 至 –80 C 以下, 再放入液氮槽 vapor phase 長期儲存。 *-20 C 不可超過 1 小時,以防止冰晶過大,造成細(xì)胞大量死亡,亦可跳過此步驟直接放入 -80 C 冰箱中,惟存活率稍微降低一些。 16 細(xì)胞欲冷凍保存時,細(xì)胞冷凍管內(nèi)應(yīng)有多少細(xì)胞濃度? 冷凍管內(nèi)細(xì)胞數(shù)目一般為 1x106 cells/ml vial ,融合瘤細(xì)胞則以 5x106 cells/ml vial 為宜。 17 應(yīng)如何避免細(xì)胞污染? 細(xì)胞污染的種類可分成細(xì)菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉?jié){菌。主要的污染原因為無菌操作技術(shù)不當(dāng)、操作室環(huán)境不佳、污染之血清和污染之細(xì)胞等。嚴(yán)格無菌操作技術(shù)、清潔的環(huán)境、與品質(zhì)良好之細(xì)胞來源和培養(yǎng)基配制是減低污染 的好方法 。18 如果細(xì)胞發(fā)生微生物污染時,應(yīng)如何處理? 加入相應(yīng)抗生素,直接滅菌后丟棄之。 19 支原體 (mycoplasma) 污染的細(xì)胞, 是否能以肉眼觀察出異狀? 不能。除極有經(jīng)驗之專家外,大多數(shù)遭受支原體污染的細(xì)胞株,無法以其外觀分辨之。 20 支原體污染會對細(xì)胞培養(yǎng)有何影響? 支原體污染幾乎可影響所有細(xì)胞之生長參數(shù),代謝及研究任一數(shù)據(jù)。故進(jìn)行實驗前,必須確認(rèn)細(xì)胞為 mycoplasma-free ,實驗結(jié)果之?dāng)?shù)據(jù)方有意義。 21 細(xì)胞株有支原體污染時, 該如何處理? 直接滅菌后丟棄,以避免污染其它細(xì)胞株。 22 CO2 培養(yǎng)箱之水盤如何保持清潔? 定期 ( 至少每兩周一次 ) 以無菌蒸餾水或無菌去離子水更換之。
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